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  • 改良Lillie-Mayer苏木素染色液 100ml   科研实验试剂  现货
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  • 改良Lillie-Mayer苏木素染色液 100ml 科研实验试剂 现货

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商品参数
    商品描述

    产品简介:

    苏木素(Hematoxylin)和伊红(Eosin)联合染色简称HE染色,是病理学和组织学很常用的一种染色方法。苏木 精为碱性天 然染料,可使细胞核着色。细胞核内染色质的主要成分是DNA,在DNA的双螺旋结构中,两条核苷酸链上的磷酸基向外,使DNA双螺旋的外侧带负电荷,呈酸性,很容易与带正电荷的苏木 精碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。

    改良Lillie-Mayer苏木素染色液无毒,无氧化膜,细胞核染色质着色深而细微,临床上常替代Harris苏木素染色液。对细胞核染色很清晰,不着染胞质和纤维成分,属进行性染色,故染色后可以不用盐酸乙醇分化,染色时间约5~8min,如果是充分氧化后可染色3~5min。常用于糖原等特染、酶组化和免疫组化等染色后复染细胞核作对照染色,尤其适用于经过特殊染色后不能经酸处理时对细胞核的复染。在特殊染色中,常与天青石蓝B液联合染色,使细胞核染色后不被后续的酸性染料所褪色。

    染色原理:

    细胞核染色的原理:

    苏木素为碱性天 然染料,可使细胞核着色。细胞核内染色质的成分主要是DNA,在DNA双螺旋结构中,两条核苷酸链上的磷酸基向外,使DNA双螺旋的外侧带负电荷,呈酸性,很容易与带正电荷的苏木素碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。苏木素在碱性溶液中呈蓝色,所以细胞核被染成蓝色。

    细胞浆染色的原理:

    伊红是一种化学合成的酸性染料,在一 定条件下可使细胞浆着色。细胞浆的主要成分是蛋白质,为两性化合物,细胞浆的染色与染液的pH值密切相关。当染色液pH值在胞浆蛋白质等电点(4.7~5.0)以下时,胞浆蛋白质以碱式电离,则细胞浆带正电荷,就可被带负电荷的酸性染料染色。伊红在水中离解成带负电荷的阴离子,与胞浆蛋白质带正电荷的阳离子结合,使细胞浆着色,呈现红色。

    分化作用:

    染色后,用某些特定的溶液将组织过多结合的染色剂脱去,这个过程称为分化作用,所用的溶液称为分化液。在HE染色中常用1%盐酸乙醇作为分化液,因酸能破坏苏木素的醌型结构,使组织与色素分离而退色。大多数组织经苏木素染色后,必须用1%盐酸乙醇分化,使细胞核过多结合的苏木素染料和细胞浆吸附的苏木素染料脱去,再进行伊红染色,才能保证细胞核与细胞浆染色的分明。

    返蓝作用:

    分化之后,苏木素在酸性条件下处于红色离子状态,呈红色;在碱性条件下处于蓝色离子状态,呈蓝色。组织切片经酸性乙醇分化后呈红色或粉红色,立即用水除去组织切片上的酸而中止分化,再用弱碱性水使苏木素染上的细胞核呈现蓝色,这个过程称为返蓝作用或蓝化作用。另外用自来水浸洗也可使细胞核返蓝,但所需时间较长。

    产品组成:

    编号

    名称

    DH0001

    DH0001

    Storage

    改良Lillie-Mayer苏木素染色液

    100ml

    500ml

    RT

    使用说明书

    1份

    自备材料:

    1、酸性乙醇分化液

    2、蓝化液,如稀氨水、碳酸 锂溶液等

    3、系列乙醇

    4、伊红染色液

    5、4%多聚甲醛

    操作步骤(仅供参考)

    (一)石蜡切片染色

    1、 切片脱蜡至水

    ①二甲苯作用2次,每次5~10min。

    ②(可选)无水乙醇作用2次,每次3~5min。

    ③95%的乙醇 3~5min

    ④90%的乙醇 3~5min

    ⑤80%的乙醇 3~5min

    ⑥自来水或蒸馏水冲洗 1~3min

    2、染色

    ①改良Lillie-Mayer苏木素染色液染色 5~8min

    ②自来水或蒸馏水冲洗 5~10s

    ③(可选)盐酸乙醇分化 2~5s

    ④自来水冲洗 20~30s

    ⑤(可选)蓝化液返蓝 20~40s

    ⑥自来水冲洗 30~60s

    ⑦伊红染色液染色 3~5min

    ⑧自来水冲洗 1~5s

    3、脱水、透明、封固

    ①80%乙醇 10~20s

    ②90%乙醇 10~20s

    ③95%乙醇作用2次,每次1~2min。

    ④无水乙醇作用2次,每次2~3min。

    ⑤二甲苯透明3次,每次2~3min。

    ⑥中性树脂封片。

    染色结果:细胞核呈蓝色;细胞质、肌纤维、胶原纤维等呈深浅不一的红色;角蛋白、红细胞等呈明亮的橙红色。

    (二)冰冻切片染色

    1、乙 醚-乙醇混合固定液 5~10s

    2、自来水冲洗 2~5s

    3、改良Lillie-Mayer苏木素染色液滴染1~2min(可加热至50℃)。

    4、自来水冲洗 2~5s

    5、(可选)盐酸乙醇分化 2~5s

    6、自来水冲洗 2~5s

    7、(可选)蓝化液返蓝 2~5s

    8、自来水冲洗 5~10s

    9、伊红染色液染色 2~5s

    10、自来水冲洗 1~2s

    11、80%的乙醇 1~2s

    12 、95%的乙醇 1~2s

    13、无水乙醇 2~5s

    14、苯酚二甲苯(1:3) 2~5s

    15、二甲苯透明3次,每次2~5s。

    16、中性树脂封片

    染色结果:细胞核呈蓝色;细胞质、纤维呈红色。

    (三)细胞染色

    1、4%多聚甲醛固定10~20min。

    2、自来水冲洗2次,每次2min。

    3、蒸馏水冲洗2次,每次2min。

    4、染色、脱蜡、透明、封固步骤同石蜡切片的染色步骤,作用时间应相应缩短。

    染色结果:细胞核呈蓝色;细胞质、纤维呈红色。

    注意事项:

    1、 切片脱蜡应尽量干净。

    2、 系列乙醇应经常更换新液。

    3、 盐酸乙醇分化时间应根据切片厚薄、组织类别以及新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够,以便彻底清洗酸。

    4、 乙 醚-乙醇混合固定液是由乙 醚和95%乙醇等量混合而得,再加入适量乙酸,密闭保存。

    5、 冷冻切片染色时间尽量要短。

    6、 蓝化液常使用0.2~1%氨水或Scott促蓝液或0.1~1%碳酸 锂溶液。

    7、 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

    有效期: 12个月有效。

    • 购买人 会员级别 数量 属性 购买时间
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