DPPH 自由基清除能力检测试剂盒说明书(可见分光光度法)
产品内容:
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液 | 液体 50 mL×1 瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 液体 60 mL×1 瓶(自备) | 常温保存 |
试剂二 | 粉剂×1 瓶 | 2-8℃保存 |
试剂三 | 粉剂×1 支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、试剂一:无水乙醇自备;
2、试剂二:粉剂置于瓶内 EP 管中。临用前加入 6.08 mL 试剂一振荡溶解,用不完的试剂可于-20℃保存 1 个月,建议分装保存,避免反复冻融;临用前根据试验所需量按照试剂二:试剂一(V:V)= 4:21 的比例配制成工作液,现配现用,用不完的工作液可于 2-8℃保存一周;
3、试剂三:10 mg 维生素 C。临用前加入 1 mL 提取液,充分振荡溶解,配成 10 mg/mL 维生素 C 溶液,2-8℃ 保存两周;用于阳性对照。
产品说明:
DPPH 自由基一种很稳定的氮中心的自由基,是样本抗氧化能力的重要指标之一,广泛应用于抗氧化类食品、保健品及药品的研究中。
DPPH 自由基有单电子,其醇溶液呈紫色,在 515 nm 处有强吸收。当有抗氧化剂存在时,DPPH 自由基被清除,其溶液颜色变浅,515 nm 的吸光度下降,在一定范围内其吸光度的变化与自由基被清除的程度成正比。本试剂盒中,通过吸光度下降的程度来反映样本清除 DPPH 自由基的能力。
Antioxidants
DPPH? DPPH?H
注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、1 mL 玻璃比色皿、恒温水浴锅、台式离心机、无水乙醇、研钵/粉碎机、烘干箱、30~50 目筛和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本的制备(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
(1) 植物样本的制备:将新鲜样本置于 60℃烘箱烘干至恒重,研钵研碎(或粉碎机粉碎),过 30~50 目筛。称取约 0.05 g 样本,加入 1 mL 提取液,40℃水浴浸提 30 min。室温 10000 rpm 离心 10 min,取上清,置冰上待测。
(2) 红酒、果汁等液体样本:吸取 100 μL 样本溶液加入 900 μL 提取液,旋涡振荡混匀,室温 10000 rpm 离心 10 min,取上清,置冰上待测。
(3) 提取物或者药物:可用提取液配制成一定浓度,如 5 mg/mL。
注意:不同样本清除 DPPH 自由基的能力可能相差很大,为保证实验结果的准确性,样本要根据预实验结果进行适当调整(如清除率大于 90%,建议将提取的样本用提取液进行稀释;清除率小于 5%,建议加大烘干样本质量或液体样本体积进行提取)。
二、测定步骤
1、分光光度计预热 30 min 以上,调节波长至 515 nm,无水乙醇调零。
2、阳性对照的准备:若需要线性关系,建议将 10 mg/mL 的维生素 C 溶液用提取液配制成 0.3、0.25、0.125、
0.0625、0.03125、0.015625 mg/mL 的维生素 C 溶液待用,稀释可参考下表;若需要清除率约为 100%的阳性对照, 则建议将 10 mg/mL 维生素 C 溶液用提取液配制成大于 0.3 mg/mL 的维生素 C 溶液待用。
序号 | 稀释前浓度(mg/mL) | 试剂三体积(μL) | 提取液体积(μL) | 稀释后浓度(mg/mL) |
1 | 10 | 100 | 900 | 1 |
2 | 1 | 300 | 700 | 0.3 |
3 | 0.3 | 500 | 100 | 0.25 |
4 | 0.25 | 300 | 300 | 0.125 |
5 | 0.125 | 300 | 300 | 0.0625 |
6 | 0.0625 | 300 | 300 | 0.03125 |
7 | 0.03125 | 300 | 300 | 0.015625 |
备注:实验中每个标准管需 25μL 试剂三。
3、操作表:在 1.5 mL EP 管中分别加入下列试剂
试剂名称(μL) | 空白管 | 测定管 | 对照管 | 阳性对照管 |
上清液 | - | 25 | 25 | - |
试剂三 | - | - | - | 25 |
提取液 | 25 | - | - | - |
试剂一 | - | - | 975 | - |
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