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  • 谷氨酸合成酶(GOGAT)活性检测试剂盒 (紫外分光光度法 )
    谷氨酸合成酶(GOGAT)活性检测试剂盒 (紫外分光光度法 )
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  • 谷氨酸合成酶(GOGAT)活性检测试剂盒 (紫外分光光度法 )

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商品参数
    商品描述

    谷氨酸合成酶(GOGAT)活性检测试剂盒说明书紫外分光光度法

    产品组成:

    试剂名称

    规格

    保存条件

    提取液

    液体 60 mL×1

    4℃保存

    试剂一

    液体 60 mL×1

    4℃保存

    试剂二

    粉剂×2

    4℃保存

    试剂三

    粉剂×2

    4℃保存

    试剂四

    粉剂×2

    -20℃保存

    溶液的配制:

    工作液的配制:取试剂二、试剂三、试剂四各一支加入 30 mL 试剂一中溶解,现用现配,可分装后-20℃保存,避免反复冻融。

    产品说明:

    GOGAT 主要存在于原核生物、酵母菌及高等植物非绿色组织的前质体中,和谷氨酰胺合成酶(GS)共同构成 GS/GOGAT 循环,参与氨同化的调控。

    GOGAT NADH 为电子供体,催化谷氨酰胺的氨基转移到 α-酮戊二酸形成两分子的谷氨酸,NADH 340nm

    吸光度的下降速率可以反映 GOGAT 活性大小。

    注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

    需自备的仪器和用品:

    紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 石英比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

    操作步骤:

    一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

    1、细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积mL500~10001 的比例建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液,超声波破碎细菌或细胞冰浴,功率 20%200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 10000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

    2、组织:按照组织质量g):提取液体积(mL)15~10 的比例建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液,进行冰浴匀浆。10000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

    二、测定步骤

    1、紫外分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 340nm,蒸馏水调零。

    2、工作液提前配置,平衡至室温。

    3、样本测定

    试剂名称(μL

    测定管

    工作液

    900

    样本

    100

    混匀,加样本的同时开始计时,在 340 nm 波长下记录 20 秒时的初始吸光度 A1,比色后迅速将比色皿连同反应液一起放入 25℃水浴或培养箱中准确反应 5 分钟;迅速取出比色皿并擦干,340nm 下比色,记录 5 20 秒时的吸光度 A2,计算 ΔA=A1-A2

    三、GOGAT 活性计算

    1. 按样本蛋白浓度计算:

    单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。GOGATU/mg prot=[ΔA×V 反总÷ε×d×109]÷(V ×Cpr) ÷T=321.5×ΔA÷Cpr

    1. 按样本质量计算:

    单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。GOGATU/g 质量)=[ΔA×V 反总÷ε×d×109]÷(W ×V ÷V 样总) ÷T=321.5×ΔA÷W

    1. 按细菌或细胞数量计算:

    单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟消耗 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。GOGATU/104 cell=[ΔA×V 反总÷ε×d×109]÷(500×V ÷V 样总) ÷T=0.643×ΔA

    V 反总:反应体系总体积,10-3LεNADH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cmd:比色皿光径,1cmV 样: 加入样本体积,0.1mLV 样总:加入提取液体积,1mLT:反应时间,5minCpr:样本蛋白质浓度,mg/mLW样本质量,g500:细菌或细胞总数,500 万;109:单位换算系数,1mol =109nmol

    注意事项:

    1、测定期间样本在冰上放置,以免变性和失活。

    2、最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。

    3、当 A1 大于 1.5 或者 ΔA 大于 0.6 时,建议将样本用蒸馏水稀释后测定,当 ΔA 过小时,可以延长酶促反应时间

    10min 15min)或者加大加入的样本体积进行测量。

    4、由于提取液中含有一定浓度的蛋白(约 1mg/mL),所以在测定样品蛋白浓度时需要减去提取液本身的蛋白含量。

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