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  • 丙酮酸羧化酶(PC)活性检测试剂盒  紫外分光光度法  科研用品
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  • 丙酮酸羧化酶(PC)活性检测试剂盒 紫外分光光度法 科研用品

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商品参数
    商品描述

    丙酮酸羧化酶(PC)活性检测试剂盒说明书

    紫外分光光度法

    产品组成:

    试剂名称

    规格

    保存条件

    提取液

    液体 110 mL×1

    4℃保存

    试剂一

    液体 30 mL×1

    4℃保存

    试剂二

    液体 10 mL×1

    4℃保存

    试剂三

    粉剂×1

    -20℃保存

    试剂四

    粉剂×1

    -20℃保存

    试剂五

    液体 5 mL×1

    4℃保存

    试剂六

    液体 15 μL×1

    4℃保存

    试剂六稀释液

    液体 10 mL×1

    4℃保存

    溶液的配制:

    1、试剂三:临用前加入 5 mL 蒸馏水溶解;可分装后-20℃保存,避免反复冻融;

    2、试剂四:临用前加入 5 mL 蒸馏水溶解;可分装后-20℃保存,避免反复冻融;

    3、试剂六:液体置于试剂瓶内 EP 管中。临用前按试剂六:试剂六稀释液=1.6:660V:V)的比例稀释试剂六备用,现用现配;

    4、工作液的配制:按照试剂二:试剂三:试剂四=2:1:1 的体积比例充分混匀,现用现配。

    产品说明:

    丙酮酸羧化酶(pyruvate carboxylasePCEC 6.4.1.1)广泛存在于动物、霉菌和酵母的线粒体中,但在植物体和大部分细菌中却不含此酶。是供给草酰乙酸的主要补充反应,是糖异生过程的第一个限速酶。

    PC不可逆的催化丙酮酸、ATPCO2和水生成草酰乙酸、ADPPi,苹果酸脱氢酶进一步催化草酰乙酸和NADH生成苹果酸和NAD+,在340nm下测定NADH氧化速率,即可反映PC活性。

    注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

    需自备的仪器和用品:

    紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、1mL石英比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

    操作步骤:

    一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

    1、称取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞,加入 1mL 提取液,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。

    24℃1000g 离心 10min。将上清液移至另一离心管中,4℃11000g 离心 15min

    3、上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 PC(此步可选做,可以判断线粒体提取效果)。

    4、在沉淀中加入 1mL 提取液,超声波破碎功率 20%,超声 5 秒,间隔 10 秒,重复 12 次),用于 PC 活性测定,并且用于蛋白含量测定。

    二、测定步骤

    1、分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。

    2、试剂一用前37℃孵育15min

    3、操作表:在1mL石英比色皿中分别加入下列试剂:

    试剂名称(μL

    空白管

    测定管

    试剂一

    450

    450

    工作液

    320

    320

    试剂五

    80

    80

    试剂六

    100

    100

    样本

    50

    蒸馏水

    50

    1mL 石英比色皿中分别加入上述试剂,充分混匀后于 340nm 处测定 10s 时的吸光值 A1,迅速置于 37(哺乳动物水浴 2min,拿出迅速擦干测定 130s 时的吸光值 A2,计算 ΔA 测定管=A1 测定-A2测定,ΔA 空白管=A1 空白-A2 空白,ΔA=ΔA 测定管-ΔA 空白管。(空白管只需做 1-2 次)

    三、PC活性计算

    单位的定义:每毫克蛋白每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。

    PC酶活(U/mg prot= ΔA÷ε×d×109×V反总÷V×Cpr÷T=1607×ΔA÷Cpr

    εNADH摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cmd:比色皿光径,1cmV反总:反应体系总体积,1×10-3LV样: 反应体系中样本体积,0.05mLCpr:样本蛋白浓度,mg/mLT:反应时间:2min109:单位换算系数, 1mol=109nmol

    注意事项:

    1、为保证实验结果的准确性,需先取 1-2 个样做预实验,ΔA 大于 0.8 时,建议将粗酶液用提取液稀释后再进行测定。当 ΔA 小于 0.01 时,可以延长反应时间(5min 10min)来测定。

    2、空白管为检测各试剂组分质量的检测孔,正常情况下,变化不超过 0.05

    3、样本的蛋白浓度需自行测定,由于提取液中含有较高的蛋白浓度1mg/mL),所以测定样本蛋白浓度时需扣除提取液自身蛋白浓度。

    4、推荐使用样本蛋白浓度计算酶活,若用样本质量计算,则需加测胞浆提取物酶活,上清和沉淀酶活之和方为总酶活。

    5、本试剂盒试剂足够完成 50 管反应。

    6:使用样本重量计算公式:(样本检测数为 50T/24S

    A、上清中 PC 活力的计算:

    酶活定义:每克样本每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。

    PC 酶活(U/g 质量)=ΔA1÷ε×d×109×V 反总÷V ×W÷V 样总)÷T = 1607×ΔA1÷W

    ΔA1:上清测定值;εNADH 摩尔消光系数,

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